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    COSMOSIL 09048-01色谱柱

    简要描述:COSMOSIL 09048-01色谱柱
    胆甾醇基固定相
    使用条件与C18柱相同
    提高了立体选择性和几何异构体的分离度
    适用于天然物的分离

    • 产品型号:
    • 厂商性质:经销商
    • 更新时间:2025-03-28
    • 访  问  量:263
    详细介绍
    品牌New Cosmos/日本新宇宙供货周期现货
    应用领域医疗卫生,化工,生物产业,制药/生物制药,综合

    产品信息

    疏水相互作用

    下图为Cholester与C18柱的疏水相互作用的比较结果。结果显示Cholester与C18柱具有相同的疏水性。因此使用Cholester代替C18柱或C30柱时,不需要改变分析条件。

    COSMOSIL 09048-01色谱柱

    分析条件
    流动相Methanol/H2O = 80/20样品
    1. Benzene (1.67μg)

    2. Toluene (1.67μg)

    3. Ethylbenzene (1.67μg)

    4. n-Propylbenzene (1.67μg)

    5. n-Butylbenzene (1.67μg)

    6. Amylbenzene (1.67μg)

    流速1.0ml/min
    温度30°C
    检测器UV 254 nm

    立体选择性

    Cholester的固定相具有刚性的结构并且能够区别分子形状的不同。对于烷基键合填料(C18和C30)难以分离的结构相似的化合物,Cholester可以实现很好的分离。如下例所示,Cholester保留平面苯并菲的时间长于立体邻三联苯。

    表. 立体选择性的比较

    COSMOSIL 09048-01色谱柱

    COSMOSIL 09048-01色谱柱

    COSMOSIL 09048-01色谱柱

    分析条件
    柱尺寸4.6 mm I.D. x 150 mm
    流动相Methanol : Water = 90 : 10
    流速1.0 ml/min
    温度30 °C
    检测器UV 254 nm
    样品1. o-Terphenyl 0.10 µg
    2. Triphenylene 0.01 µg

    分离性能的改进

    与传统的C18柱相比,Cholester具有更强的选择性和分离同分异构体或结构类似物的能力,它可以较好的代替传统C18色谱柱。下图是氯代苯乙酮异构体的分析结果。结果显示,使用C18柱和C30柱很难分离的氯代苯乙酮异构体,使用Cholester时得到了很好的结果。

    COSMOSIL 09048-01色谱柱

    更高的制备效率

    下图是Cholester与C18柱的制备分离性能比较的结果。两种色谱柱都得到了良好的分离结果。然而,分离性能的微小差异会影响制备柱的样品承载量,Cholester可以负荷的样品承载量是C18柱的4倍。

    COSMOSIL 09048-01色谱柱



    分析条件
    柱尺寸4.6 mm I.D. x 150 mm检测器UV 254 nm
    流动相Methanol : Water = 100 : 0样品
    1. Bibenzyl

    2. Anthracene

    流速1.0ml/min
    温度30°C













    应用数据

    儿茶素 (Catechins)

    分析条件
    柱尺寸4. 6mm I.D. x 150 mm样品
    1. (-)‐Gallocatechin [(-)‐GC](0.80mg/ml)

    2. Caffeine (0.08mg/ml)

    3. (-)‐Epigallocatechin [(-)‐EGC](0.80mg/ml)

    4. (-)‐Catechin [(-)‐C](0.40mg/ml)

    5. (-)‐Epicatechin [(-)‐EC](0.40mg/ml)

    6. (-)‐Epigallocatechin Gallate [(-)‐EGCg](0 20mg/ml)

    7. (-)‐Gallocatechin Gallate [(-)‐GCg](0.40mg/ml)

    8. (-)‐Epicatechin Gallate [(-)‐ECg](0.20mg/ml)

    9. (-)‐Catechin Gallate [(-)‐Cg](0.20mg/ml)

    Injection Vol. 1.0μl

    流动相A: Acetonitrile/ 20mmol/l Phosphate buffer(pH2.5) = 10/90
    B: Acetonitrile/ 20mmol/l Phosphate buffer(pH2 5) = 30/70
    B conc. 0→100% 20min Linear gradient
    流速1.0 ml/min
    温度30°C
    检测器UV280nm

    黄酮 (Flavones)

    分析条件
    柱尺寸4. 6mm I.D. x 150 mm样品
    1. Fisetin (0.25μg)

    2. Myricetin (0.20μg)

    3. 7,8-Dihydroxyflavone (0.05μg)

    4. Luteolin (0 20μg)

    5. Quercetin (0.20μg)

    6. 7-Hydroxyflavone (0.10μg)

    7. Baicalein (0.05μg)

    8. 6-Hydroxyflavone (0.05μg)

    9. Flavone (0.05μg)

    10. Chrysin (0.05μg)

    11. 6-Methoxyflavone (0.05μg)

    12. 3-Hydroxyflavone (0.25μg)

    13. 5-Hydroxyflavone (0.05μg)

    流动相A: Acetonitrile/ 20mmol/l Phosphate buffer(pH2 5) = 20/80
    B: Acetonitrile/ 20mmol/l Phosphate buffer(pH2.5) = 70/30
    B conc. 0→100% 20min Linear gradient
    流速1.0 ml/min
    温度30°C
    检测器UV280nm















    使用信息

    色谱柱5μm Cholester
    内径(mm)2.03.04.6102028
    柱长(mm)ALLALLALL20-15025020-100150-250ALL
    出厂溶剂乙腈 / 水 = 60 / 40甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20甲醇 / 水 = 70 / 30甲醇 / 水 = 80/ 20
    冲洗方法
    1. 去除色谱柱内的缓冲液,盐,酸的方法:使用不含缓冲液,盐,酸的流动相冲洗10-15分钟。
      例:流动相为甲醇/磷酸缓冲液(20mmol/L) =50/50时,就使用甲醇/水 =50/50冲洗

    2. 冲洗色谱柱内附着物的方法,基线不稳时的解决方法

    • 样本不是蛋白质时,使用甲醇或四氢呋喃冲洗。

    • 样品是蛋白质时,使用含0.1%三氟。乙酸的50-70%的乙腈/水冲洗


    保存方法
    1. 短期(数日)保存:
      使用不含缓冲液,盐,酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。
      例:流动相为甲醇/磷酸缓冲液(20mmol/L) =50/50时,就使用甲醇/水 =50/50冲洗

    2. 长期(1个月以上)保存:
      使用后,先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱,再将流动相置换为乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。


    pH范围pH2~pH7.5
    最大耐压20MPa15MPa
    温度范围最高可耐60度,建议在20~50度下进行分析。
    可使用的溶剂

    除碱溶液和强酸溶液(pH1.5以下)以外都可以使用。(强碱溶液会使硅胶溶化,强酸溶液会使固定相脱落)
    注意点:
    溶剂粘度过高会导致压力上升,请将压力控制在20Mpa以下。 使用酸性流动相或凝固点高的溶剂后,必须清洗色谱柱。


    注意事项
    • 一般情况下缓冲液浓度为0.005~0.02 mol/L即可。

    • 流动相在使用前一定要通过0.5μm以下的滤膜过滤。

    • 蛋白质反相模式分析时,请使用大孔径色谱柱(孔隙直径300?) COSMOSIL Protein - R(粒径5μm)。

    色谱柱2.5μm Cholester
    内径(mm)2.03.0
    柱长(mm)ALLALL
    出厂溶剂乙腈 / 水 = 50 / 50
    冲洗方法
    1. 去除色谱柱内的缓冲液,盐,酸的方法:使用不含缓冲液,盐,酸的流动相冲洗10-15分钟。
      例:流动相为甲醇/磷酸缓冲液(20mmol/L) =50/50时,就使用甲醇/水 =50/50冲洗

    2. 冲洗色谱柱内附着物的方法,基线不稳时的解决方法

    • 样本不是蛋白质时,使用甲醇或四氢呋喃冲洗。

    • 样品是蛋白质时,使用含0.1%三氟。乙酸的50-70%的乙腈/水冲洗


    保存方法
    1. 短期(数日)保存:
      使用不含缓冲液,盐,酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。
      例:流动相为甲醇/磷酸缓冲液(20mmol/L) =50/50时,就使用甲醇/水 =50/50冲洗

    2. 长期(1个月以上)保存:
      使用后,先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱,再将流动相置换为乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30,保存。
























































    订购信息

    分析柱 (粒径 : 5 µm)
    科思美析 (COSMOSIL) Cholester

    产品名称柱尺寸货号价格
    科思美析 Cholester ?;ぶ?/td>


    4.6 mm I.D. x 10 mm05975-71
    10 mm I.D. x 20 mm05978-41
    20 mm I.D. x 20 mm05980-91
    20 mm I.D. x 50 mm05981-81
    28 mm I.D. x 50 mm05983-61
    COSMOSIL Cholester ?;ぶ?br/>柱芯需与柱套Guard cartridge holder 配套使用.4.6 mm l.D. x 10 mm19183-24
    科思美析 Cholester


    1.0 mm I.D. x 150 mm05968-71
    1.0 mm I.D. x 250 mm05969-61
    2.0 mm I.D. x 150 mm05971-11
    2.0 mm I.D. x 250 mm05972-01
    3.0 mm I.D. x 150 mm05973-91
    3.0 mm I.D. x 250 mm05974-81
    4.6 mm I.D. x 50 mm06359-21
    4.6 mm I.D. x 100 mm06591-61
    4.6 mm I.D. x 150 mm05976-61
    4.6 mm I.D. x 250 mm05977-51
    10 mm I.D. x 150 mm08011-91
    10 mm I.D. x 250 mm05979-31
    20 mm I.D. x 150 mm06088-71
    20 mm I.D. x 250 mm05982-71
    28 mm I.D. x 250 mm05985-41

    超高速液相色谱柱 (粒径 : 2.5 µm)
    科思美析 (COSMOSIL) 2.5Cholester

    产品名称柱尺寸货号价格
    科思美析 2.5Cholester


    2.0 mm l.D. x 50 mm09000-01
    2.0 mm l.D. x 75 mm09047-11
    2.0 mm l.D. x 100 mm09048-01
    3.0 mm l.D. x 50 mm09049-91
    3.0 mm l.D. x 75 mm09050-51
    3.0 mm l.D. x 100 mm09051-41

















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